laboratorio clinico cbtis 26

domingo, 2 de junio de 2013

"TOMA DE MUESTRAS BIOLÓGICAS"

Centro de Bachillerato Tecnológico Industrial y

de Servicios nº 26

Especialidad: laboratorio clínico Grado: 2º Grupo: "p"

DR: Fausto Guzmán Ortíz

Alumno: cristian gabriel sanchez matias

Bienvenidos a mi blog personal, de laboratorio clínico en el que les mostrare: las indicaciones que se le debe dar al paciente, pasos para la toma de muestra y los procesos para llevar acabo los analisis

MI EQUIPO DE LABORATORIO CLÍNICO

antes de empesar con todas las practicas que emos realizado, lo primero que debes de saber es que en un laboratorio clínico lo mas importante es saber trabajar en equipo.

mi equipo esta conformado por,adriana elisabet,celeste andrea,sandra dellaneira,luis, y yo(cristian gabriel)

sábado, 1 de junio de 2013

MICOSIS

(HONGOS DE PARED)

Materiales:

1 porta objetos

Azul de metileno

microscopio

1 cubre objetos

lo primero que debemos de realisar es tener la muestra que vamos a analisar, en este caso hongo de pared

foto tomada por la compañera alondra anai.

procedemos a llevarla al laboratorio y despues

poner una gota de agua destila en el porta objetos y despues agrgar la muestra.

agregamos una gota de azul de metileno y esperaramos 5minutos.

de ahy lavar muy cuidadosamente con agua y fijarlo con un mechero de bumsen.

de ahy ponemos un cubre objetos al porta objetos y lo observamos en el microscopio.

aqui podemos observar como se ve en el microscopio.

micosis

Se denominan micosis superficiales a las infecciones de las mucosas, piel y anejos cutáneos (pelo y uñas) producidas por diferentes especies de hongos. El concepto de micosis superficial viene dado por la localización del proceso que no va más allá del epitelio o capa más externa de la piel.

para realisar este analisis primero necesitamos una muestra que puede ser de: uña, cabello.
y se le indica al pasiente que: lo lleve en un frasco esteril,

Colocar una gota de KOH al 20 % en el centro de un portaobjeto. La gota debe ser pequeña porque al calentar pueden producirse proyecciones del KOH sobre el cubre y al enfriarse se observarán cristales que interferirán en la visualización.

· Agregar las escamas sobre la gota y por encima un cubreobjeto.

· Flamear el portaobjeto hasta el desprendimiento de burbujas. Este procedimiento sirve para aclarar la queratina. Si se sospecha de Pitiriasis Versicolor se recomienda, además, teñir los preparados con Azul de Metileno. En caso de sospechar Pseudomicosis se debe recoger el material digerido por el Hidróxido con agua destilada, luego se centrifuga y se efectúa la coloración del sedimento por los métodos de Gram, Kinyoun y Giemsa.

· Observar con objetivo de 10X y luego de 40X buscando:

a) Filamentos que pueden estar o no artrosporados. (Posibles agentes causales: Dermatofitos y raramente otros hongos filamentosos).

b) Estructuras levaduriformes.

c) Filamentos cortos y acumulo de levaduras de 3 a 8 um de diámetro (Pitiriasis versicolor).

d) Con objetivo de 100X se prodrán observar filamentos largos, flexuosos u ondulados de 0,6 a 0,8 um de diámetro, de longitud variable presentando, algunos, ramificaciones. Son Gram + y Ácido resistentes (Kinyoun +). (Sospecha diagnóstica: Eritrasma. Agente causal: Nocardia spp. o Corynebacterium spp.)

en esta imagen se observa la muestra que va aser analisada en el microscopio

en esta imagen se muestra que el pasiente efectivamente tenia un hongo

micosis cabello

· Cortar los cabellos parasitados en fragmentos de unos 5 mm aproximadamente.

· Montarlos entre portaobjetos y cubreobjetos con KOH al 20 %. Para pelos muy atacados podemos visualizar mejor las estructuras con una gota de Gueguén o Lactofenol. En caso de sospechar Tricomicosis se debe recoger el material digerido por el Hidróxido con agua destilada, luego se centrifuga y se efectúa la coloración del sedimento por los métodos de Gram, Kinyoun y Giemsa.

· Calentar suavemente hasta el desprendimiento de burbujas y observar al microscopio en objetivos de10X y 40X. Buscando:

a) Conidios y/o hifas en el interior del pelo. Se denomina parasitación endotrix cuando se encuentran conidios invadiendo el cortex y la médula del pelo. Este tipo de parasitación se presenta cuando el agente causal es Trichophyton rubrum, T. tonsurans y otras especies más raras del género Trichophyton. Cuando en el interior del pelo se observan hifas largas, se denomina invasión fávica que es causada exclusivamente por T. schoenlenii.

b) Conidios en el exterior del pelo, generalmente dispuestos en cadenas. Este tipo de parasitación se denomina ectotrix que es causada por Microsporum canis, M. gypseum, T. mentagrophytes, T. rubum y otras especies raras de Microsporum y Trichophyton.

c) Micelio filamentoso ligeramente parduzco de 4 a 6 um. de diámetro, casi totalmente segmentado acompañados de ascos elípticos de 25 a 35 um. en su diámetro mayor conteniendo 8 ascosporos fusiformes con un filamento terminal en cada polo. (Sospecha diagnóstica: Piedra negra. Agente causal: Piedraia hortai).

d) Micelio filamentoso con artroconidios de 2 a 4 um de diámetro medio, cuyo desarrollo ha tenido lugar entre la epidermícula y el tallo del pelo. (Sospecha diagnóstica: Piedra blanca. Agente causal: Trichosporon spp.)

e) Con objetivo de 100X se podrán ver filamentos largos, flexuosos u ondulados de 0,6 a 0,8 um de diámetro, de longitud variable presentando, algunos, ramificaciones. Son Gram + y Ácido resistentes (Kinyoun +). (Sospecha diagnóstica: Tricomicosis. Agente causal: Nocardia spp.o Corynebacterium spp.)

la muestra de cabello se puso en un porta

en estas imagenes se puede apreciar como se ve el hongo atraves del microscopio

medios de cultivo

Un medio de cultivo consta de un gel o una solución que cuenta con los nutrientes necesarios para permitir, en condiciones favorables de pH y temperatura, el crecimiento de virus,microorganismos, celulas, tejidos vejetales o incluso pequeñas plantas. Según lo que se quiera hacer crecer, el medio requerirá unas u otras condiciones. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados; ya preparados pueden encontrarse en estado sólido, semisólido o líquido. El objetivo último del cultivo es variado: antibiograma, identificación, multiplicación.

PREPARACIÓN DE UN CULTIVO
la intencion de un medio de cultivo es para despues poder cultivar en el bacterias y encontrar muchas cosas como las colonias que cresen y de que tipo son.

Material:

Bascula granataria

Espátula

Matraz elenmeyer

Cajas de petri

Mechero de bunseng

equipo:

Autoclave

Sustancias :

Azul de metileno

Agar TCBS

infucion cerebro corazon

PROCEDIMIENTO:
lo primero es averiguar la capacidad de las cajas de petri, para eyo ocupamos agua(normal) y las fuimos llenando con una pipeta asta aproximar su capacidad y realisar las siguientes operaciones
cada agar es preparado de dirente manera, ates que nada ay que seguir las indicaciones que bienen alreberso de los botes de cada sustancia.

Agar azul metileno:

36gX30/1000ml= 1.08g

Infuncion cerebro corazon:

37gX20/1000ml= 0.74g

Agar tcbs

58X15/1000ml= 1.35

AGAR AZUL DE METILENO :